Sel T CARProduksi dan infus sel T reseptor antigen kimerik: 1. Sel T diisolasi dari darah pasien 2. Gen baru yang menyandi reseptor antigen kimerik dimasukkan ke dalam sel T 3. Sel T yang direkayasa kini spesifik terhadap antigen target yang diinginkan 4. Sel T yang direkayasa diperbanyak dalam kultur jaringan 5. Sel T yang direkayasa diinfuskan kembali ke dalam tubuh pasien
Dalam biologi, reseptor antigen kimerik (bahasa Inggris:chimeric antigen receptorscode: en is deprecated , CAR), dikenal pula sebagai imunoreseptor kimerik (chimeric immunoreceptorscode: en is deprecated ), reseptor sel T kimerik (chimeric T cell receptorscode: en is deprecated ), atau reseptor sel T buatan (artificial T cell receptorscode: en is deprecated ), adalah protein reseptor yang telah direkayasa untuk memberikan sel T kemampuan baru dalam menargetkan antigen tertentu. Reseptor ini bersifat kimerik karena menggabungkan fungsi pengikatan antigen dan aktivasi sel T dalam satu reseptor.
Terapi sel T CAR menggunakan sel T yang direkayasa dengan CAR untuk mengobati kanker. Sel T dimodifikasi agar dapat mengenali sel kanker dan menghancurkannya. Pendekatan standar adalah mengambil sel T dari pasien, mengubahnya secara genetik, kemudian menginfuskan kembali sel T CAR yang dihasilkan ke dalam tubuh pasien untuk menyerang tumor mereka.[1]
Sel T CAR dapat berasal secara autolog dari sel T dalam darah pasien sendiri atau secara alogenik dari donor. Setelah diisolasi, sel T ini direkayasa secara genetik untuk mengekspresikan CAR tertentu, menggunakan vektor yang berasal dari lentivirus yang telah direkayasa seperti HIV . CAR memprogram sel T untuk menargetkan antigen yang terdapat pada permukaan sel tumor. Demi keamanan, sel T CAR direkayasa agar spesifik terhadap antigen yang diekspresikan pada sel tumor tetapi tidak pada sel sehat.[2]
Setelah sel T yang dimodifikasi diinfuskan ke dalam tubuh pasien, sel tersebut bertindak sebagai "obat hidup" melawan sel kanker.[3] Ketika bersentuhan dengan antigen target pada permukaan sel, sel T akan berikatan dengannya dan menjadi teraktivasi, kemudian berkembang biak dan menjadi sitotoksik.[4] Sel T CAR menghancurkan sel melalui beberapa mekanisme, termasuk proliferasi sel yang sangat terstimulasi, peningkatan tingkat toksisitas terhadap sel hidup lainnya (sitotoksisitas), serta dengan menyebabkan peningkatan sekresi faktor-faktor yang dapat memengaruhi sel lain seperti sitokin, interleukin, dan faktor pertumbuhan.[5]
Permukaan sel T CAR dapat memiliki salah satu dari dua jenis koreseptor, yaitu CD4 dan CD8. Kedua jenis sel ini, masing-masing disebut CD4+ dan CD8+, memiliki efek sitotoksik yang berbeda namun saling berinteraksi. Terapi yang menggunakan rasio 1 banding 1 dari kedua jenis sel ini tampaknya menghasilkan efek antitumor yang sinergis.[6]
Pada tahun 1991, reseptor kimerik yang mengandung domain pensinyalan intraseluler CD3ζ terbukti dapat mengaktifkan pensinyalan sel T oleh Arthur Weiss di Universitas California, San Francisco.[12] Penelitian ini mendorong penambahan domain intraseluler CD3ζ ke dalam reseptor kimerik dengan domain ekstraseluler mirip antibodi, yang umumnya berupa domain variabel rantai tunggal (single-chain fraction variablecode: en is deprecated , scFv), serta protein seperti CD4, yang kemudian disebut sebagai CAR generasi pertama.[13][14]
CAR generasi pertama yang mengandung domain ekstraseluler CD4 dan domain intraseluler CD3ζ digunakan dalam uji klinis pertama sel T reseptor antigen kimerik oleh perusahaan bioteknologi Cell Genesys pada pertengahan 1990-an, yang memungkinkan sel T yang ditransfer secara adoptif menargetkan sel yang terinfeksi HIV, meskipun tidak menunjukkan perbaikan klinis.[13] Uji klinis awal serupa terhadap sel T CAR pada tumor padat pada tahun 1990-an yang menggunakan CAR generasi pertama yang menargetkan antigen tumor padat seperti MUC1 juga tidak menunjukkan persistensi jangka panjang dari sel T yang ditransfer maupun menghasilkan remisi yang signifikan.[15]
Pada awal tahun 2000-an, domain kostimulatori seperti CD28 atau 4-1BB ditambahkan ke domain intraseluler CD3ζ pada CAR generasi pertama. Disebut sebagai CAR generasi kedua, konstruksi ini menunjukkan persistensi yang lebih besar dan peningkatan pembersihan tumor dalam model praklinis.[16] Uji klinis pada awal 2010-an yang menggunakan CAR generasi kedua yang menargetkan CD19, suatu protein yang diekspresikan oleh sel B normal serta limfoma dan leukemia sel B, oleh peneliti di NCI, Universitas Pennsylvania, dan Memorial Sloan Kettering Cancer Center menunjukkan efektivitas klinis terapi sel T CAR dan menghasilkan remisi lengkap pada banyak pasien yang telah menjalani berbagai pengobatan sebelumnya.[15] Uji coba ini pada akhirnya mengarah di Amerika Serikat pada dua persetujuan pertama oleh FDA terhadap terapi sel T CAR pada tahun 2017, yaitu untuk tisagenlecleucel (Kymriah), yang dipasarkan oleh Novartis awalnya untuk leukemia limfoblastik akut prekursor sel B (B-ALL), dan axicabtagene ciloleucel (Yescarta), yang dipasarkan oleh Kite Pharma awalnya untuk limfoma sel B besar difus (DLBCL).[15] Hingga tahun 2022, enam terapi sel T CAR telah disetujui oleh FDA.[17]
Produksi
Gambaran terapi transfer sel adopsif dengan sel T rekayasa CAR
Langkah pertama dalam produksi sel T CAR adalah isolasi sel T dari darah manusia. Sel T CAR dapat diproduksi baik dari darah pasien sendiri, yang dikenal sebagai pengobatan autolog, maupun dari darah donor sehat, yang dikenal sebagai pengobatan alogenik. Proses pembuatannya sama dalam kedua kasus; yang berbeda hanya pilihan donor darah awal.[butuh rujukan]
Pertama, leukosit diisolasi menggunakan pemisah sel darah dalam proses yang dikenal sebagai aferesis leukosit. Sel mononuklear darah perifer (PBMC) kemudian dipisahkan dan dikumpulkan.[18][19] Hasil aferesis leukosit kemudian dipindahkan ke pusat pemrosesan sel. Di pusat pemrosesan sel, sel T tertentu distimulasi agar dapat berproliferasi secara aktif dan berkembang menjadi jumlah yang besar. Untuk mendorong ekspansi ini, sel T biasanya diberi perlakuan dengan sitokininterleukin 2 (IL-2) dan antibodi anti-CD3.[20] Antibodi anti-CD3/CD28 juga digunakan dalam beberapa protokol.[19]
Sel T yang telah diperbanyak kemudian dimurnikan dan ditransduksi dengan gen yang mengode CAR hasil rekayasa melalui vektor retrovirus, biasanya berupa gammaretrovirus yang berintegrasi (RV) atau vektor lentivirus (LV).[19] Vektor-vektor ini pada masa kini sangat aman karena adanya penghapusan sebagian pada wilayah U3.[21] Alat penyuntingan gen baru CRISPR/Cas9 baru-baru ini digunakan sebagai pengganti vektor retrovirus untuk mengintegrasikan gen CAR ke lokasi tertentu dalam genom.[22]
Pasien menjalani kemoterapi limfodeplesi sebelum pengenalan sel T CAR hasil rekayasa.[4] Penurunan jumlah leukosit yang bersirkulasi dalam tubuh pasien meningkatkan jumlah sitokin yang diproduksi serta mengurangi persaingan sumber daya, yang membantu mendorong ekspansi sel T CAR hasil rekayasa.[23]
↑Kuwana Y, Asakura Y, Utsunomiya N, Nakanishi M, Arata Y, Itoh S, etal. (Desember 1987). "Expression of chimeric receptor composed of immunoglobulin-derived V regions and T-cell receptor-derived C regions". Biochemical and Biophysical Research Communications. 149 (3): 960–968. Bibcode:1987BBRC..149..960K. doi:10.1016/0006-291x(87)90502-x. PMID3122749.
↑Gross G, Gorochov G, Waks T, Eshhar Z (February 1989). "Generation of effector T cells expressing chimeric T cell receptor with antibody type-specificity". Transplantation Proceedings. 21 (1 Pt 1): 127–130. PMID2784887.
↑Rosenbaum L (October 2017). "Tragedy, Perseverance, and Chance - The Story of CAR-T Therapy". The New England Journal of Medicine. 377 (14): 1313–1315. doi:10.1056/NEJMp1711886. PMID28902570. S2CID205114161.
↑Eshhar Z, Bach N, Fitzer-Attas CJ, Gross G, Lustgarten J, Waks T, Schindler DG (1996). "The T-body approach: potential for cancer immunotherapy". Springer Seminars in Immunopathology. 18 (2): 199–209. doi:10.1007/BF00820666. PMID8908700. S2CID19872173.
↑Irving BA, Weiss A (March 1991). "The cytoplasmic domain of the T cell receptor zeta chain is sufficient to couple to receptor-associated signal transduction pathways". Cell. 64 (5): 891–901. doi:10.1016/0092-8674(91)90314-o. PMID1705867. S2CID23466990.
↑Sadelain M, Rivière I, Brentjens R (Januari 2003). "Targeting tumours with genetically enhanced T lymphocytes". Nature Reviews. Cancer. 3 (1): 35–45. doi:10.1038/nrc971. PMID12509765. S2CID33707802.